做實驗不會制備細胞爬片怎么行?

我們在做免疫熒光（IF），激光共聚焦(Confocal)，凋亡檢測（TUNEL）時，免不了要制備細胞爬片，爬片質量*決定了最后拍照的質量以及實驗數據的精準性。今天，就教大家如何制備好的細胞爬片。

一. 實驗材料及試劑

蓋玻片、培養板、酒精燈、鑷子等；75%乙醇、DMEM*培養基（RPMI-1640*培養基）、胰酶等。

二、實驗內容

爬片準備：

1、24*24蓋玻片，剛好用于6孔板。也可用更大的蓋玻片，放在大的培養皿中爬片。

2. 蓋玻片泡酸過夜，第二天先用自來水沖洗20遍，再置于無水酒清中浸泡6小時，再用三蒸水沖洗3遍（個人認為主要目的是將酸沖洗干凈就可以了，如果不干凈的話，細胞帖壁不好），放在飯盒或者玻璃培養皿中烘干后進行高壓消毒、烤干。

3．蓋玻片浸泡75%乙醇10分鐘消毒，然后酒精燈上烤干，直接放入培養皿，開始種細胞。重點是玻片是干凈的、無菌的。

4.蓋玻片在液體中經常有貼壁吸附力，用一般鑷子很難一次性夾起，將注射器針頭針尖向背面弄個小鉤，這樣將爬片輕輕勾起，用小鑷子取出就可以。

細胞進行爬片：

1. 胰酶消化細胞后計數重懸細胞于*培養基中（懸浮細胞直接離心）。

2. 加細胞時，根據玻片的大小，先在每個孔里準備放爬片的位置滴少量培養基，目的是使玻片與培養皿靠培養基的張力粘合到一起，然后放玻片，防止加細胞懸液時玻片漂起，造成雙層細胞貼片。整個過程注意無菌操作。

3. 根據自己的需要選擇合適的細胞密度種入培養板內即可

保存細胞爬片時，一般用培養皿或避光濕盒，先在皿底放一層面巾紙，然后再放爬片，這樣方便做實驗時取片。然后蓋上蓋子，并在蓋子上做標記，為避免混淆。一般-20℃保存2-3月的片子去拍照沒有問題的。制備好的細胞爬片是不是很簡單呢？

三、注意事項

1. 使用細胞爬片時（比如在六孔板中放入爬片，六孔板的孔底面積往往會比爬片面積多出一部分，加細胞懸液時常常就是細胞鋪滿整個孔底，有時細胞生長邊集現象，就是靠近壁邊緣密度要高些，這樣處于中央玻片上爬的細胞數量就可能相對較少）。比較好的做法是將玻片放入孔板的孔內后，加細胞懸液時只滴到玻片上，一直滴到液體布滿整個玻片又不會溢出玻片邊緣。

2. 按照實驗設計，作用一定時間后取玻片。注意細胞不能太密，否則容易掉片。